HR8623 細胞膜染色試劑DiO

本探針通常不會明顯影響細胞的活力,因此被廣泛用于正向或逆向的,活的或固定的神經等細胞或組織的示蹤劑。除了最簡單的細胞膜熒光標記外,還可以用于檢測細胞的融合和粘附,檢測發育或移植過程中細胞遷移,通過FRAP檢測脂在細胞膜上的擴散,檢測細胞毒性和標記脂蛋白等。...
使用注意事項:
● 螺旋蓋微量管裝的試劑在開蓋前請短暫離心,將蓋內壁上的液體收集至管底,避免開蓋時液體灑落。
● DIOC16(3) PERCHLORATE染色液為DMSO溶液,冬季氣溫較低時在室溫時為凝固狀態,極易粘附在管壁、吸頭壁。注意需要加熱溶解,吸頭也需要放在培養箱預熱,否者容易再次凝固在吸頭內壁產生損耗。
● 使用前,先將本品取出回溫至室溫,并對其進行簡短離心使DMSO溶液集中于管底。
● 細胞處理需要小心操作,盡量避免人為的損傷細胞。
● 標記的條件因細胞種類而異,根據不同樣本的實際染色結果做相應調整,在每次實驗前,請先根據不同的實驗要求、細胞類型、細胞的膜通透性等進行優化,確定最佳條件。以下方法僅供參考。
● 染色后立即進行分析。
● 本染色液可用于細胞涂片、細胞的檢測。
使用方法:
一、染色工作液的配制:
1、根據樣本數量,用37℃培養箱預熱的HBSS將DIOC16(3) PERCHLORATE熒光染料400-2000倍稀釋,配制成染色工作液。
【注】:
● 也可以直接用相應的無血清培養基或其他緩沖液稀釋DIOC16(3) PERCHLORATE染料至所需濃度。
● 開始實驗前,使用無血清培養基或HBSS緩沖液稀釋染料儲存液到需要的工作濃度。工作濃度應根據不同細胞的預實驗結果確定的最佳工作濃度,建議至少在超過10倍范圍的濃度下進行測試。一般染色終濃度400-2000倍稀釋,1000-2000倍適合大多數細胞樣本。
● 建議收到產品后,根據單次使用量,對母液進行小量分裝,每次使用一管,試劑-20℃避光凍存,一年穩定。
● 工作液現配現用。
● 為了降低探針加載過度可能引起的假陽性,建議在不影響染色效果的情況下盡量使用低濃度。
● 若細胞在染色后于不含染料的培養基中孵育,熒光信號會衰減。
二、細胞染色
A:懸浮細胞染色
1、用PBS洗滌細胞2次。
2、加入適量體積的染色工作液重懸細胞,使其密度大約為1×106/mL。
3、在37℃孵育細胞5~20分鐘,不同的細胞最佳培養時間不同。可以用20分鐘作為起始孵育時間,之后優化體系以得到均一的標記結果。
【注】:
● 若染色不夠充分,建議增加染料濃度或延長染色時間。
4、孵育結束,500×g離心5分鐘。
5、傾倒上清液,再次緩慢加入37℃預熱的培養液重懸細胞。
6、重復(4),(5)步驟兩次以上
B:貼壁細胞染色
1、用PBS洗滌細胞2次。
2、細胞培養板中或細胞爬片上加入適量體積的染色工作液。
【注】:
● 96孔細胞培養板每孔加入100μL染色液即可。
3、37℃孵育細胞5~20分鐘,不同的細胞最佳培養時間不同。可以用20分鐘作為起始孵育時間,之后優化體系以得到均一的標記結果。
【注】:
● 若染色不夠充分,建議增加染料濃度或延長染色時間。
4、吸干染色工作液,用培養液洗培養板或蓋玻片2~3次,每次用預熱的培養基覆蓋所有細胞,孵育5~10分鐘,然后吸干培養基。
三、用熒光顯微鏡或流式細胞儀檢測
最大激發波長為488nm,最大發射波長為500nm。
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