試劑盒的正確使用與否直接關乎著試驗的成功與否，快來對照一下多重PCR擴增試劑盒，你使用對了嗎!

所謂多重PCR（Multiplex Polymerase Chain Reaction，mPCR），也稱復合PCR，由Chambehian' 在1988年提出（Chambehian' et.al.Nucleic Acids Res、1988 Dec 9; 16(23): 11141–11156.），基本原理與常規PCR相同，區別在于多重PCR的反應體系是加入多對引物，各對引物分別結合在模板的相應位置，zui終擴增出多條DNA片段。

多重PCR實驗流程

相比于液相雜交，多重PCR的是特異性強，實驗周期短，技術也相對簡單。下面為大家介紹實驗流程：

我們公司多重PCR的實驗，就是由兩輪PCR完成。di一輪PCR的作用是利用目標區域特異的引物去擴增，得到的產物是目標區域的富集片段，因此，此步驟也是實現了從基因組中“捕獲”目標區域的目的。

之后把得到的產物進行純化，再通過第二輪PCR中引入Index和Adaptor。

這樣，在經過了兩輪PCR后，就獲得了完整的文庫。把第二輪PCR產物純化后，就可以定量，測序了。

實驗注意事項：

1、先從樣本說起，我們公司的多重PCR平臺可以做的樣本包括血液，唾液，口腔拭子，在實驗中，對于DNA投入量要求不是很高，根據不同項目需求，DNA投入量的范圍在100 pg到100 ng 之間。

2、進行PCR反應前，可以將所有 gDNA 的濃度稀釋到同一濃度，并轉移到 PCR 8 聯管中，一方面是便于排槍操作，另一方面是加入相同起始量的 gDNA，這樣可以降低zui終文庫的濃度差異，便于混合文庫。

3、大多數情況下引物是1管，操作相當方便；當目標區域是外顯子或者是其他連續區域時，我們會把引物分裝為2管，分別命名Primer pool T1與Primer pool T2，這時需要第二輪PCR前把產物合并，再進行下一步反應。

4、執行多重PCR反應時，特別是樣本量多的情況下，可以將 T1 設為一組，T2 設為一組，便于制備反應試劑混合液和排槍操作； 并把解凍好的試劑放置在冰盒上，在冰盒上進行加樣操作。

5、在實驗中，可以在PCR管壁上和管蓋上同時進行反應編號標記，防止高溫或其他原因導致記號消失，避免后續產物混合操作失誤， 造成樣本交叉污染。

6、第二輪PCR后，因為YF Buffer B試劑比較粘稠，在清洗純化的時候不能吸走所有試劑，可以剩余5-10μl，否則會把磁珠一起吸走，造成樣品的損失，導致產物回收率下降。

當實驗完成后，正常文庫濃度處于5-30 ng/μl，而片段長度一般在280-460 bp之間，且主峰前后無雜峰，就可以進行測序了。

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