細胞培養被支原體污染是個世界性問題，在細胞培養中支原體感染發生率達到63%。支原體是一類無細胞壁，形態呈高度多形性，為圓形、絲狀或梨形，其直徑僅有0.13～0.18μm，變形能力大，故能通過濾菌器，突出的結構特征是沒有細胞壁，對作用于細胞壁生物合成的抗生素不敏感。研究表明，支原體能耗盡營養物，促進代謝積累，導致pH改變，對細胞造成多種影響，包括生長狀況、生化特性、代謝、免疫、以及細胞存活等多方面的改變，繼而干擾實驗結果，或造成無法解釋的差異。加不幸的是拯救被感染的細胞幾乎是不可能的。

那如何檢測你的細胞是否收到支原體的入侵呢？下面介紹了幾種檢測方式，或許對你的實驗有用。

分離培養法

分離培養法是支原體檢測的金標方法，其檢測度高。這種方法是從可疑的細胞培養體系中取樣，并接種到適宜支原體生長的瓊脂平板上。如果樣本中含有支原體，它們就會在這種瓊脂平板上瘋狂生長，終形成明顯可見的特征性菌落。分離培養法基本不會出現假陰性結果，因此被譽為支原體檢測金標準。

但是，分離培養法也存在兩個弊端，一是檢測時間太長，支原體要長出明顯克隆至少需要4周時間。二是盡管可以檢測絕大多數支原體種類，分離培養法也有力所不及的時候，例如支原體M. hyorhinis。

DNA檢測法，也稱直接培養法

將可疑樣品與指示細胞共同培養，一般需要幾天時間。DNA檢測所用的指示細胞通常是細胞質區域較大的Vero細胞，如果原樣本中含有支原體，那么當細胞DNA被熒光染料（如Hoechst染料）染色時，就可以在指示細胞的核周圍觀察到熒光斑點或熒光顆粒。

但是這種方法靈敏度太低，當檢測成陽性時，細胞經常已經嚴重污染。且Hoechst熒光染色：操作復雜，操作不當易造成假陽性或假陰性。

PCR法

PCR法采用針對支原體DNA的引物用PCR檢測可疑樣本，其PCR引物可特異擴增支原體基因組中rDNA保守序列，包括所有已知的支原體，及細胞培養過程普遍遇到的種屬，例如M. arginini、M. arthritidis、M. bovis、M. fermentans、M. genitalium、M. hominis、M. hyorhinis、M. neurolyticum、M. orale、M. pirum、M. pneumoniae、M. pulmonis、M. salivarium 和U. urealyticum。在凝膠電泳過程中，支原體DNA會顯示為特異性條帶，以此指示支原體的存在。

PCR法快速，簡便，具有強擴增能力和極高的敏感性，可以檢測大多數支原體，但謹慎起見好同時使用另一種檢測方法來進行驗證。PCR法檢測支原體只需幾個小時，是快但也是不靈敏的支原體檢測方法。

酶學檢測

酶學檢測是將可疑樣本添加到特定底物中，在這一體系內支原體的酶可以將ADP轉化為ATP，隨后能利用ATP發光的luciferase酶就可以指示支原體的存在。

后，建議你進行定期檢測

支原體感染會影響細胞的正常生長，因此對培養細胞定期進行支原體檢測非常重要。一般來說每1至3個月就應該進行一次支原體檢測。將定期支原體檢測常規化堅持下去，是細胞培養實驗室應對支原體感染的關鍵